HER2表达的定量检测新方法，识别HER2低表达乳腺癌

　　*仅供医学专业人士阅读参考

　　新型检测方法基于定量测定，弥补现有检测方法的不足，实现对HER2低表达乳腺癌的精准检测。

　　一些新型药物开启了HER2低表达乳腺癌靶向治疗的新时代，但是如何筛选出最佳获益人群成为目前亟待解决的问题，这是因为传统HER2检测旨在区分HER2扩增和未扩增病例，其灵敏度不足以针对HER2低表达乳腺癌进行准确区分。近期，病理学权威期刊《Laboratory Investigation》发表的一篇研究报道”Quantitative measurement of HER2 expression to subclassify ERBB2 unamplified breast cancer“中，研究者为确定乳腺癌中未扩增HER2检测的最佳动态范围，构建并验证了一种检测HER2表达的新方法。这种检测方法能够实现HER2的定量检测，有利于基于不同HER2表达水平进行更加精准的患者分层。

　　现有检测方式不能覆盖HER2低表达，新型方式亟待探索

　　HER2阳性或者ERBB2基因扩增约占乳腺癌的15%，包括单克隆抗体、小分子酪氨酸激酶抑制剂（TKI）、ADC药物等一系列抗HER2靶向治疗显著改善了HER2阳性乳腺癌患者的临床结局。但是既往抗HER2靶向治疗仅针对免疫组化（IHC）染色为3 +或HER2/CEP17荧光原位杂交（FISH）扩增比率≥2.0且HER2拷贝数信号/细胞≥4的患者有效。因此，大多数乳腺癌患者（85%）被认为是HER2“阴性”（IHC 0或IHC 1 + 或IHC 2 +/FISH-）。

　　基于在HER2 IHC评分为1 + 和2 +（未扩增）的患者中观察到新型HER2靶向ADC药物的抗肿瘤活性，与治疗疗效紧密相关的HER2扩增概念正在逐渐发生变化。由于目前使用的HER2检测旨在区分HER2扩增和未扩增肿瘤，HER2 IHC在低表达范围（0和1 +）的评分准确性较差。在一项80个美国病理学家学会成员水平测试的调研案例中，15例评定者间的一致性低于70%。这可能是由于在低表达范围内，通过HER2蛋白对肿瘤的染色非常弱。在一些研究中，HER2在肿瘤中的表达范围很广泛，从每个细胞表达约1000个分子至超过1,000,000个分子。极少数检测方法能覆盖HER2表达水平的3个数量级动态范围。例如，IHC染色法能覆盖的线性动态范围通常仅在一个数量级以内。因此，为了准确评估乳腺癌中HER2蛋白表达，需要使用不止一种抗体浓度进行多次检测，或者选择具有3个数量级动态范围的检测方法。

　　虽然对HER2表达进行全动态范围的检测可能具有价值，但现有的HER2检测方法仅可以区分HER2扩增和未扩增，只适用于曲妥珠单抗和其他靶向HER2扩增的药物。鉴于这些检测方式不包含HER2低表达范围，有必要构建一种分辨率在HER2低表达范围内的新型检测方法。这可能通过显色测定得到实现，该研究使用定量免疫荧光结合质谱标准化的HER2阵列形成一种可定量的检测方法，可在常规组织切片上测量以attomol/mm2为单位的HER2蛋白的绝对量，检测方法开发概述见图1。研究者旨在开发一种针对HER2低表达的特异性检测方法，并从系列回顾性乳腺癌病例集中检测HER2低表达的发生率。

　　

　　图1. HER2低表达检测示意图。通过LC-MS/MS定量检测HER2表达范围的细胞系用于生成细胞微阵列（CMA）标准。测定细胞面积（mm2），可以将总蛋白中HER2表达的单位从amol/ug转化为amol/mm2。采用不同抗HER2抗体浓度对CMA进行染色，确定检测限（LOD）/定量限（LOQ）和线性度（LOL）。AQUA评分和amol/mm2之间的线性回归分析可以生成一条标准曲线，用于计算以amol/mm2为单位的HER2表达。使用AQUA分析乳腺癌染色组织。经过分析，HER2表达/病例可以amol/mm2为单位进行定量。

　　材料和方法

　　细胞系和培养条件

　　7个细胞系来自美国模式培养物集存库（ATCC，Manassas，VA 20110，USA），包括：JURKAT#TIB-152、BT20#HTB-19、T47D#HTB-133、ZR-75-1#CRL-1500、BT483#HTB-121、AU565#CRL-2351和BT474#HTB-20。按照ATCC提供的培养方法培养各细胞系。来自这些细胞系的细胞团被冷冻并送至Protypia公司测定总蛋白中以attomoles（amol）/μg为单位的HER2表达。

　　液相色谱-串联质谱（LC-MS/ MS）

　　Protypia公司通过LC-MS/MS分析7种细胞系中HER2的蛋白丰度。根据生产商说明，使用M-PERTM试剂盒（ThermoFisher Scientific，Rockford,IL）从冷冻细胞团块中提取蛋白质，并加入HALTTM蛋白酶抑制剂（ThermoFisher Scientific）。用BCA试剂盒（ThermoFisher Scientific）分析蛋白含量，并将100 μg蛋白还原、烷基化并用胰蛋白酶消化。向胰蛋白酶消化物中加入HER2肽[13 C6,15N4-Arg]-DPPFCVAR和[13 C6,15N4-Arg]-ELVSEFSR（99.5%同位素纯度；Vivitide，Gardner，MA）标准品，通过高pH反相色谱和一次性离心柱（Thermo-Fisher Scientific）分离提取。含有目标肽的组分，通过如前所述的LC-MS/MS平行反应监测分析。使用Skyline20分析样品中标记标准肽和未标记HER2肽的MS/MS裂解，并根据肽序列的三个最强MS/MS裂解的信号总和与加入的标准品量的比值，计算HER2蛋白丰度（以amol/μg蛋白计）。

　　HER2校准CMA

　　HER2校准细胞微阵列（CMA）由Array Science LLC（Sausalito，CA）构建。细胞系排列成两列，如图2所示。

　　

　　图2. Array Science的HER2校准CMA。A：HER2/ErbB2 EP3 Epitomics 1:100的IHC染色在耶鲁纽黑文医院的临床实验室改进修正案（CLIA）实验室进行。B：在本研究实验室用1.28 μg/mL HER2 29D8（克隆29D8，#2165，Cell Signaling Technology）进行IHC染色。

　　HER2标准化耶鲁TMA（YTMA263）、乳腺癌队列（YTMA489、YTMA499）和乳房成形术来源的乳腺组织队列（YTMA540）

　　HER2标准化组织微阵列(TMA)的构建，来自于提取从1998年至2011年在耶鲁病理学系收集到的80例FFPE乳腺癌的空心针取样、10例乳腺细胞系对照（在耶鲁制备）和10例非肿瘤乳腺组织空心针取样。如前所述，根据HER2状态将样本进行排列。本研究中使用的两个乳腺癌队列（YTMA489和YTMA499）分别由2011-2012年和2013-2014年在耶鲁病理学系收集到的263例和190例FFPE系列乳腺癌组成。从病理学报告中提取CLIA认证的IHC和FISH检测结果。每个队列的两个重复TMA来自两个独立的YTMA489和YTMA499区组，每个区组包含每例患者的一个不相邻的肿瘤空心针样本。类似地，YTMA540 提取至 2011 年至 2014 年之间进行乳房缩小成形术（整容手术）的没有任何已知乳腺疾病的 16 名女性患者（年龄 18 62 岁，中位数 36.5 岁）的 FFPE 乳房组织空心针样本。在TMA上使用每个队列的3份重复样本。

　　抗体、免疫组化和定量免疫荧光

　　染色和蛋白表达的验证

　　为了抗体验证，对靶向HER2胞内结构域的两种不同HER2抗体进行了检测；29D8（CST#2165；R-IgG），识别人HER2蛋白酪氨酸1248周围的残基，PATHWAY抗HER-2/neu（4B5）（Roche_#107918，R-IgG），识别人HER2蛋白的TAENPEYLGL表位（残基1242–1254）。首先，使用相同的工作浓度，在相同的染色条件比较YTMA263相同肿瘤位点中两个克隆的染色模式。用29D8和4B5测定的HER2水平高度相关（rS = 0.87，P < 0.0001）（图3A)。由于4B5已被证明与ERBB4有交叉反应，在本研究中的分析仅使用29D8测定的HER2水平。此外，考虑到批间/操作员间的差异，在定义HER2低表达测定的优化条件后，由两名独立的操作员对标准化YTMA263和校准CMA进行染色，结果显示批间/操作员间具有高度一致性和重现性。（图3B, C）

　　

　　图3. 抗体试剂的验证和质量控制。A HER2 ICD两个不同克隆之间的相关性散点图显示Operator 1和Operator 2在C的校准CMA和B的YTMA263的相关性，使用HER2低表达检测。

　　染色方法(IHC)

　　进行显色染色（Liquid DAB + Substrate Chromogen，Dako），然后用Tacha苏木精（Biocare Medical，Concord，CA，USA）复染3分钟，并用乙醇和二甲苯脱水。在耶鲁CLIA实验室，使用Leica Bond III Refine polymer DAB Detection和HER2/ErbB2 clone EP3 Epitomics 1:100，上以低pH提取40分钟（图2A)。Rimm Lab则使用1.28 μg/mL的HER2/ErbB2 29D8（克隆29D8，#2165，Cell Signaling Technology）和压力煮沸容器（PT Module，Lab Vision，Thermo Scientific，Waltham，MA）（图2B）。最后，使用Cytoseal 60（Thermo Scientific，Waltham，MA）封片，并在Aperio ScanScope XT平台中成像。

　　数字图像分析(DIA)

　　在x40下使用Aperio ScanScope XT平台对载玻片进行数字化扫描。使用QuPath评估每个细胞系的面积（mm2）/细胞，进行自动细胞分割可检测单个细胞核或细胞，并支持测算每个细胞所占面积。使用4个独立的CMA片子，每个片子具有两倍冗余。使用每个细胞系8次测量的平均细胞面积计算面积（mm2）/细胞。

　　染色方法（HER2/CK/DAPI）（QIF）

　　TMA/CMA切片脱蜡后，在压力煮沸容器（PT Module，Lab Vision，Thermo Scientific，Waltham，MA）中用EDTA pH 8缓冲液在97 °C下进行抗原孵育20 min。然后将载玻片在0.3%过氧化氢甲醇溶液中孵育30 min，以抑制内源性过氧化物酶活性，然后与0.3%牛血清白蛋白和0.05%吐温-20封闭液再孵育30 min。将抗HER2的一抗（克隆29D8，Cell Signaling）用于组织，在4 ℃下以7种不同浓度/稀释度(0.000128 μg/mL-12.8 μg/mL)与细胞角蛋白（CK）以1:100稀释（单克隆小鼠抗人细胞角蛋白，克隆AE1/AE3；广谱筛选，Dako，Glostrup，Denmark）过夜孵育。使用的二抗包括anti-rabbit EnVision试剂（Dako）和anti-mouse Alexa Fluor 546 （Invitrogen，1:100），分别用于HER2和CK。Cy5酪胺（PerkinElmer，1:50）用于显像HER2阳性细胞。使用4′,6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI）复染和显示细胞核，用ProLong Gold Antifade试剂（Invitrogen）封片。

　　此外，使用HER2低表达测定方式，在同一天对来自两个独立YTMA489和YTMA499组织块（每个组织块含有一个非相邻肿瘤核心）的两个载玻片进行相同的染色程序，以观察批次差异。

　　图像采集和计量

　　使用PM-2000系统（Navigate Biopharma，Carlsbad，CA，USA）采集荧光图像，并使用QIF的AQUATM方法测定表达水平。如前所述，通过目标像素强度之和除以分子指定的隔室面积产生AQUA评分。为了区分肿瘤与组织基质和其他成分，通过将CK信号二值化并创建上皮隔室，创建了上皮肿瘤“掩模”。将AQUA评分标准化为采集图像的曝光时间和位深，以补偿任何变异性。对所有采集的TMA位点进行评估，分析时去除染色伪影或肿瘤（CK染色）小于2%的病例。

　　研究结果

　　细胞系HER2水平的定量测定

　　为生成标准化CMA，使用LC-MS/MS方法测定来自6种乳腺癌细胞系（BT-20、T-47D、ZR-75-1、BT-483、AU565、BT-474）和一种作为阴性对照的非乳腺癌细胞系（JURKAT）的细胞团块中的HER2表达。通过LC-MS/MS测定中连续一式三份稀释的BT-474（HER2高表达）和JURKAT（HER2无表达）的细胞混合实验，对LC-MS/MS试验的线性范围进行了探索。

　　通过LC-MS/MS测定以amol/ug为单位的总蛋白中7个细胞团块的DPPFCVAR（HER2蛋白的胞外域）和ELVSEFSR肽（HER2蛋白的胞内域）。以attomole/ug为单位的HER2定量范围从BT-20（最低未扩增细胞系）中的25 amol/ug至最高扩增细胞系（BT-474）中的1435 amol/ug。在JURKAT细胞中未检测到HER2。通过DPPFCVAR和ELVSEFR测定的HER2水平高度相关（Spearman系数r = 1.00，P = 0.004）。由于在乳腺癌细胞中观察到细胞膜表面的HER2胞外域被酶切，并且大多数常见的临床试验使用细胞质结构域抗体，因而在本研究中使用细胞内ELVSEFSR肽测量作为HER2的分析物。

　　HER2校准CMA和DIA

　　在测定每个细胞系总蛋白中以amol/μg为单位的HER2浓度后使用相同的细胞系构建了CMA（Array Science，LLC）（图2，表1），因此可以将amol/ug转换为amol/mm2。为了建立优化的HER2低表达测定方式，重点关注该阵列的非扩增细胞系（JURKAT、BT-20、T-47D、ZR-75-1和BT-483）。为了将细胞中总蛋白的单位amol/μg转换为玻片上细胞占据的amol/面积，研究使用QuPath（开源软件）评价CMA上每个细胞系的面积（mm2）/细胞。使用4个不同后续载玻片中测量的平均值作为面积/细胞（mm2）的参考值。

　　表1. 细胞系阵列特征

　　

　　测定方法开发以及检测限和定量限的确定

　　如先前Gonzalez和Herrador所述，分析信号与分析物浓度之间的响应函数或校准曲线为单调函数。一些数学模型，如数学变换以及加权回归，可以检测响应度如何随分析物浓度的变化而变化。分析方法中常见的最简单模型是线性回归分析，根据公式（1）预测响应度。

　　Y=αX+β?(公式1)

　　其中α为斜率，β为截距，标准差分别为sα和sβ。

　　在本研究中，Y对应AQUA评分，X对应amol/mm2。

　　检测限（LOD）和定量限（LOQ0是从分析灵敏度相互推导出来的两个参数，用于评估性能特性。LOD是可以检测到并与系统噪声水平准确区分的分析物最低浓度，但不一定定量；测量值大于相关不确定值的浓度。LOD可表示为响应单位（YLOD），并使用公式进行计算：

　　YLOD =Yblank +3 Sblank?（公式2）

　　其中Yblank和Sblank分别是通过测量至少10份独立样品空白获得的空白信号的平均值及其相应的标准偏差。在这种情况下，空白样本定义为染色过程中省略一抗的样本（见下文）。

　　LOQ是可定量测定的分析物最低浓度，具有可接受水平的精密度。通过测量至少10份独立样品空白并使用因子10而不是3进行计算，评价LOQ的公式与LOD的公式相似：

　　YLOD =Yblank +10 Sblank?（公式3）

　　为了评估Yblank，使用标准化的HER2 YTMA263阵列，它有超过10例HER2低表达病例。当IF方案中不加入抗HER2一抗时，获得HER2低表达病例的AQUA评分（IHC为0、1 +、2 +/未扩增）后，评估Yblank和Sblank，如上所述。

　　为了将以信号单位（YLOD、YLOQ）表示的LOD和LOQ转换为分析物浓度单位（ZLOD、ZLOQ），研究中使用了以下校准函数：

　　Z=（Y-β）/α（公式4）

　　使用范围在1.28 ng/mL到12.8 μg/mL之间的7个稀释度的一抗（HER2/ErbB2 29D8）对YTMA263进行染色和校准CMA。图4显示了标准化CMA的信号响应（标准化AQUA评分）和分析物浓度（amol/mm2）的线性回归分析。使用公式1-4能够鉴别各试验的LOD和LOQ。确定HER2低表达定量的最佳检测方法是29D8一抗的1.28 μg/mL，该浓度的抗体在未扩增细胞系（BT-483）中产生最高水平的信号，而噪声水平最低（来自Jurkat细胞的信号）。在1.28 μg/mL HER2 29D8抗体下，计算的LOD为0 amol/mm2，LOQ为2.8 amol/mm2。此外，为了评估试验线性限度，评价了每次试验的响应因子RF。响应的线性范围对应于从y = 1.05α相交点至y = 0.95α相交点的分析物浓度，假设该模型呈线性且无截距。对于1.28 μg/mL含量测定，线性上限（LOL）为19 amol/mm2。

　　

　　图4. 对照细胞系的回归显示了各检测抗体浓度下的重现性和相关性。以amol/mm2为单位的每种抗体(29D8)浓度作为X，AQUA评分为Y，进行线性回归。使用2-4倍冗余，使用线性回归方程测定各试验的LOD和LOQ。

　　在364例通过IHC/ISH表征的临床病例和11例乳房缩小成形术病例中探索HER2低表达测定的LOQ和LOL

　　在确定了最佳的线性HER2低表达检测方法后，研究者试图将其应用于一个大型队列，该队列包含2011-2014年间在YNHH采集的乳腺癌患者样本。使用364个肿瘤核心的TMA，在两倍冗余中，测量了HER2的表达水平。使用每例患者的两个空心针样本的平均值进行分析。根据最佳测定方式的回归分析方程（Y = 296.4X+607.9，图4D）。图5显示了病理学家评分显色的所有病例的直方图（0=蓝色，1=红色，2=黑色，3=绿色）。Y轴显示了364个乳腺癌组织TMA空心针样本中的HER2水平（amol/mm2）。IHC 1 + 和2 + 病例的示例图像如图6A–D所示。使用该测定法，364例中有61例（17%）低于LOQ，58/264例（16%）高于LOL。大多数病例（67%）在试验的线性范围内。有趣的是，IHC 2 +、1 + 和0的病例具有广泛的HER2表达动态范围，与之前的观察一致，即病理学家使用常规IHC检测对低表达范围病例进行准确评分具有挑战性或不可能。还应注意的是，定量测量是在组织微阵列点上进行的，而病理学家评分是来自整个组织切片。

　　

　　图5. 连续收集的人群中乳腺癌病例的分布显示许多病例高于LOQ，而常规分析认为是阴性。364例乳腺癌患者中HER2低表达测定的直方图，以amol/mm2测量。颜色编码对应HER2 IHC评分；绿色(3 +)、黑色(2 +)、红色(1 +)、蓝色(0)、灰色（NA，不适用）。LOQ定量限；LOL线性限；IHC免疫组织化学。A到D是图6中所示的情况。

　　

　　图6.具有膜性表达模式的HER2低表达病例的图示。图5中病例的代表性图像显示IHC 1 +(A)3.2 amol/mm2(B)、15 amol/mm2和IHC 2 +(C)2.8 amol/mm2和(D)7.8 amol/mm2

　　一些病理学家使用术语“HER2正常”而不是“HER2阴性”来描述正常乳腺上皮细胞的HER2表达。为了研究无已知疾病的乳腺组织中HER2表达的动态范围，研究者对YTMA540的11个可用样本进行了HER2低表达检测，YTMA540是一个由2011-2014年乳房缩小成形术病例建立的队列。值得注意的是，这些病例均未超过10amol/mm2的阈值。尽管未来将使用该测定方式研究更多病例，但初步数据显示正常乳腺导管的HER2表达水平在2.5和10 amol/mm2范围内。未来观察哪些患者能从ADC药物治疗中获益以及其肿瘤HER2表达水平是否高于“正常”临界点（10 amol/mm2）十分有意义。

　　研究总结

　　本研究使用定量免疫荧光和一系列表达HER2蛋白但ERBB2基因未扩增的细胞系，建立和验证了一种在组织样本中检测HER2表达的新方法。该方法基于质谱测量HER2蛋白量，并结合阵列形式进行标准化。HER2的表达在细胞系中以attomols/ug总蛋白测定，然后通过图像分析和面积测定转换为attomols/mm2，其中使用的AQUA分析方法可以评估单位面积的信号而不是单个细胞。这样形成的检测在2-20 attomols/mm2范围内是线性的，这个范围低于HER2扩增的细胞系或肿瘤的水平，但却在正常乳腺上皮细胞的HER2表达范围内。因此，研究者认为这个检测方法可在HER2靶向ADC药物有效的关键范围内检测检测HER2表达，而当前检测方法在这个范围内缺乏可重复性。

　　参考文献

　　[1].Moutafi M, Robbins CJ, Yaghoobi V, et al. Quantitative measurement of HER2 expression to subclassify ERBB2 unamplified breast cancer. Lab Invest. 2022 May 20.

　　* 本文由阿斯利康提供支持，仅供医疗专业人士参考

　　审批编号：CN-102687 有效期至：2023-9-19

　　*此文仅用于向医学人士提供科学信息，不代表本平台观点