张笑天合作团队揭示突变NPM1蛋白在急性髓系白血病发生中分子机制
NPM1蛋白在细胞生命活动中起到了多种重要作用,包括核仁形成,组蛋白分子伴侣等重要功能。有趣的是,NPM1蛋白在约1/3的急性髓系白血病(AML)中发生移码突变。这一移码突变导致突变NPM1蛋白C端核仁定位信号缺失,并获得额外的NES信号从而完全改变了突变NPM1蛋白的细胞亚定位(核仁到细胞浆) (图1) (1)。NPM1突变在AML中发生及其频繁,并和HOXA基因簇基因,MEIS1基因的高表达密切相关。然而造成HOXA/B MEIS1高表达的具体分子机制并不清晰。
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图1. NPM1突变及亚细胞定位改变
12月2日,德克萨斯大学休斯顿健康中心(University of Texas McGovern Medical School) 张笑天课题组联合宾夕法尼亚大学万里玲,加州理工大学种莎莎课题组在Cancer Discovery 上发表题为“Mutant NPM1 hijacks transcriptional hub to maintain pathogenic gene programs in acute myeloid leukemia”的研究长文。第一次系统性揭示了突变NPM1蛋白(NPM1c) 结合基因组区段通过转录劫持(transcriptional hijacking)维持HOXA基因簇基因,MEIS1基因的高表达的分子机制。哈佛医学院Scott Armstrong课题组同时在Cancer Discovery发表背靠背文章揭示了相似的结论(论文题目:Mutant NPM1 directly regulates oncogenic transcription in acute myeloid leukemia )。
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在前期实验中,作者发现针对NPM1c和NPM1-WT的抗体可以有效的区分突变和野生型的NPM1. 利用免疫荧光染色,作者NPM1c在细胞核和细胞浆形成50-200nm尺寸的凝聚体(condensate),迥异与NPM1-WT在核仁中的大量富集(图2)。
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图2 NPM1c与NPM1-WT免疫荧光染色
作者继而通过CUT&RUN技术使用NPM1c与NPM1-WT的特异抗体检测到NPM1-WT富集在核糖体DNA重复序列(rDNA array)上,而NPM1c丧失结合rDNA array的能力,但获得了与基因组活跃启动子和增强子的结合能力。尤其是结合在NPM1c AML中高表达的基因如HOXA基因簇基因,MEIS1基因上。重要的是,作者利用CRISPR/Cas9 knock-in NPM1c degron system 的OCI-AML3细胞系 (带有NPM1c突变)(2), 用dTAG-13处理细胞并降解NPM1c 蛋白后,NPM1c CUT&RUN信号随之消失(图3)。这个结果证明了NPM1c确实结合在NPM1c AML基因组内的活跃启动子和增强子。进一步,作者用dTag-13短时间内(<6hr)降解NPM1c蛋白,可以观察到RNA 聚合酶PolII从NPM1c靶基因上迅速消失。同样的SEC复合物重要亚基ENL,MLL复合物重要亚基Menin从NPM1c靶基因上也在dTAG-13短时处理后迅速消失。同时,作者利用BRU-seq检测新生RNA转录发现NPM1c降解后靶基因的新生RNA转录及转录延长也出现大量下降的趋势。
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图3. NPM1-WT与NPM1c的基因组结合区域 (rDNA重复序列与HOXA cluster, MEIS1区域)
这个结果说明NPM1c劫持了转录机器并且维持在NPM1c靶基因上的活跃转录。然而NPM1并不包含已知与RNA PolII结合序列。考虑到野生型NPM1蛋白序列中有1/3是无序序列,作者提出NPM1c的对PolII的转录劫持有可能是通过无序序列间的异质互作,利用种莎莎课题组于2018年发展的chromatin LacI-LacO assay,作者证实了NPM1c-LacI 在结合基因组LacO array后确实可以招募PolII(图4)。
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图4. NPM1c维持RNA PolII的基因组结合。NPM1c可在结合染色质后招募RNA PolII
NPM1c可以劫持转录,然而是否NPM1c可以如转录因子一样起始转录并不清楚。于是作者在dTAG-13将NPM1c降解完全后,洗除dTAG-13使NPM1c水平重新回复降解前水平。出乎意料的是,HOX gene表达并不能回复NPM1c降解前水平,且细胞开始大量分化。这说明在NPM1c降解后,抑制性染色质调节因子在NPM1c靶基因上被立即激活。通过CUT&RUN作者发现NPM1c蛋白水平回复后仍可结合在HOXA 基因簇及其它最强结合的靶基因上,但相应区域如HOXA基因簇的H3K27ac显著降低,并且H3K27ac水平不能随NPM1c恢复结合而恢复(图5)。这提示了组蛋白去乙酰化酶(HDAC) 可能在NPM1C去除后迅速改变了染色质状态。通过HDAC inhibitor与dTAG-13共处理NPM1c degron细胞。作者发现HDAC inhibitor 处理可以逆转dTAG-13造成的HOX gene表达下调。从而证明了NPM1c在染色质上拮抗HDAC,阻止HDAC沉默HOXA gene表达(图5)。
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图5. NPM1c在靶基因上拮抗HDAC
以上实验说明NPM1c不能起始转录,只能维持或增强已有转录。从这一系列实验,我们也能得出结论:NPM1c的转录劫持发生在HOXA/B基因簇基因和MEIS1开始被沉默的血液干祖细胞中。因为NPM1c的存在同时导致了HOXA/B基因簇基因和MEIS1不能通过HDAC介导而沉默,从而导致细胞不能正常分化,发生白血病(图6)。
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图6.NPM1c白血病发生模型
作者进一步探究了NPM1c的转录增强功能。在HOXA/B cluster都被沉默的HOXB8永生化小鼠骨髓细胞中,作者利用CRISPR/Cas9敲进NPM1c-GFP。在获得的NPM1c-GFP细胞中HOXA/B基因簇不能被激活,因为在野生型HOXB8细胞中HOXA/B cluster已经完全被H3K27me3覆盖,转录不再活跃。但NPM1c-GFP的敲进引起了其它野生型HOXB8细胞中高表达基因的增强。进一步证明了NPM1c的转录增强功能。
作者同时发现NPM1c的基因组结合依赖于NPM1c和核转运蛋白XPO1的相互作用。XPO1抑制剂可以显著降低HOXA 基因表达并促进分化,并可以显著降低NPM1c在活跃基因组区域的结合。联合使用进入临床实验的MLL-Menin抑制剂(3)和XPO1抑制剂可以协同性促进NPM1c+ AML分化,抑制HOX基因表达,并且在PDX模型中降低了白血病负担, 展示了对NPM1c AML进行精准治疗的良好前景。
David Wang, 范丹丹(温州医科大学), 韩沁钰(加州理工大学),刘易曼(宾夕法尼亚大学)为本项研究的共同第一作者。苏建忠博士课题组(温州医科大学)在这项研究中做出了重要贡献。张笑天博士是本项研究的最后通讯作者。
张笑天博士在德克萨斯大学休斯顿健康中心建立独立实验室,将继续深入研究突变NPM1蛋白在AML发生及进展中的分子机制。张博?2010年毕业于复旦?学,2016年年于Baylor College of Medicine师从美国医学院院士,表观遗传与血液干细胞专家 Margaret Goodell获得博士学位。2017-2022年于Van Andel Institute, University of Michigan先后担任special fellow, research scientist等职位。以通讯作者第一作者发表于Cancer Discovery, eLife, Molecular Cell; Nature Genetics, Nature Communications等知名期刊。课题组气氛活跃,经费充足,其实验室有2个博士后职位空缺,欢迎有兴趣的研究者直接发送简历至邮件(xiaotian.zhang@uth.tmc.edu)联系申请。
原文链接: https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-22-0424
参考文献
1. Falini B, Brunetti L, Sportoletti P, Martelli MP. NPM1-mutated acute myeloid leukemia: from bench to bedside. Blood 2020;136(15):1707-21 doi 10.1182/blood.2019004226.
2. Brunetti L, Gundry MC, Sorcini D, Guzman AG, Huang YH, Ramabadran R, et al. Mutant NPM1 Maintains the Leukemic State through HOX Expression. Cancer Cell 2018;34(3):499-512 e9 doi 10.1016/j.ccell.2018.08.005.
3. Klossowski S, Miao H, Kempinska K, Wu T, Purohit T, Kim E, et al. Menin inhibitor MI-3454 induces remission in MLL1-rearranged and NPM1-mutated models of leukemia. J Clin Invest 2020;130(2):981-97 doi 10.1172/JCI129126.
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